ESAME CITOLPATOLOGICO 2

ESAME CITOLOGICO CUTANEO E DI ORGANI

E' necessario inviare almeno tre preparati per ogni lesione cutanea o di organi, i campioni devono essere asciugati completamente all'aria.

ESAME CITOLOGICO LIQUIDO SINOVIALE

Il liquido prelevato deve essere inviato in provetta K3Edta, unitamente ad uno striscio dello stesso eseguito a fresco ( tal quale -t.q.).

LIQUIDI DI VERSAMENTO

I campioni allestiti da liquidi organici, fra cui liquido peritoneale, pleurico e pericardico, devono essere sempre inviati in una provetta contenente K3Edta (provetta da emocromo), al fine di evitare la formazione di coaguli. Se possibile, inviare contestualmente anche uno striscio a fresco del campione stesso fatto asciugare rapidamente all'aria. Se si richiede l'esame biochimico del versamento, è necessario utilizzare un'ulteriore campione in provetta da siero.

STRISCIO EMATICO

Lo striscio di sangue non deve essere ne eccessivamente lungo ne troppo corto, deve essere formato da tre porzioni, testa corpo e coda. La zona di lettura e' quella compresa tra corpo e la coda che quindi dovra' essere il piu' possibile sottile ( monostrato cellulare).

MIDOLLO OSSEO

Gli strisci effettuati da midollo osseo devono sempre essere accompagnati da un emocromo del soggetto, prelevato nello stesso giorno contestualmente ad uno striscio a fresco, il materiale midollare residuo può essere conservato in una provetta da emocromo.

AGO ASPIRATO LINFONODALE

In caso di linfoadenomegalia sistemica evitare di aspirare i linfonodi retromandibolari. Lo striscio di materiale linfonodale deve essere effettuato con estrema delicatezza per evitare l' eccessiva rottura cellulare.

TIPO DI VETRINI DA UTILIZZARE

Preferibilmente, i vetrini da utilizzare sono quelli che presentano la banda sabbiata in cui inserire l'identificativo, rigorosamente a matita ( mai a penna o pennarello ).Gli stessi dovrebbero essere di buona qualita' e con la molatura sui bordi .Laddove possibile, eseguire almeno 3 preparati da ciascuna lesione, da inviare già fissati all'aria e non colorati. Se si inviano campioni già colorati, specificare il tipo di colorazione eseguita ed inviare contestualmente altri campioni non colorati, al fine di consentire al laboratorio stesso il processamento secondo metodiche standard, con eventuale ricorso a colorazioni differenziali.

SCHEDA DA ALLEGARE

Ricordarsi sempre di compilare una scheda con le seguenti informazioni:
1. segnalamento (specie, razza, età, sesso)
2. tipo di lesione (organo di prelievo e/o localizzazione, aspetto macroscopico, dimensioni …)
3. indicazioni sul tipo di prelievo effettuato (impronta, scarificato, agoaspirato /agoinfissione…)
4. anamnesi (eventuali malattie preesistenti, evoluzione della lesione) ed eventuali sospetti diagnostici

SPEDIZIONE DEI VETRINI

Per l’imballaggio e la spedizione dei vetrini è buona norma utilizzare dei portavetrini rigidi ( plastica ), ed evitare di spedire i vetrini imballati con della semplice carta o liberi in delle scatole, riducendo al minimo il rischio di rottura durante la spedizione. Se si utilizzano portavetrini già utilizzati in precedenza, accertarsi che siano privi di detriti o residui oleosi all'interno, per non contaminare i nuovi preparati.

ESAME ISTOPATOLOGICO

Per l'esecuzione degli esami istopatologi il laboratorio si appoggia ai services esterni BIESSEA e laboratorio SAN MARCO. Di seguito riportiamo alcuni suggerimenti per un corretto campionamento istologico.
• Prelievo: l'esame istopatologico può essere eseguito su campioni bioptici ottenuti per via incisionale (prelievi di un piccolo frammento di tessuto mediante bisturi, punch, tru-cut, pinze endoscopiche...) o escissionale (asportazione chirurgica di lesioni in toto), oppure su prelievi post-mortem.
1. Trattare il campione con grande delicatezza: la compressione esercitata con le dita o con le pinze può provocare fenomeni di schiacciamento sui tessuti.
2. Evitare termocauterio e bisturi elettrici, poiché causa di grave necrosi coagulativa. 3. Scegliere accuratamente la porzione da inviare: se di piccole dimensioni, inviare la lesione in toto; se grande, effettuare prelievi multipli, evitando le aree centrali, normalmente necrotiche ed emorragiche, prediligendo le aree periferiche.
4. Ridurre il campione a dimensioni ottimali per la fissazione, poiché ricordiamo che la formalina penetra bene fino ad un massimo di 1-2 cm di spessore.
• Identificazione dei margini: se si sospetta una neoplasia è opportuno marcare i margini del campione con apposito inchiostro indelebile (inchiostro di china, tempere colorate), oppure con dei punti di sutura.
• Fissazione: i campioni devono essere “fissati” il più rapidamente possibile, ovvero immersi in un liquido che ha lo scopo di preservare i tessuti, bloccando i fenomeni di autolisi e conservandone integra la morfologia. Il fissativo di più largo uso (facile da reperire, conveniente) è la formalina (formaldeide diluita al 10%, tamponata a pH 7-7.2), da impiegare in quantità appropriata (almeno il doppio del volume del campione; rapporto ottimale 1:10). Fissativi “d'emergenza”: alcool denaturato (indurisce eccessivamente), soluzione fisiologica raffreddata. NON CONGELARE!
• Contenitore: infrangibile, di plastica, trasparente/semi-trasparente, a tenuta ermetica, con doppia chiusura e tappo esterno a vite, a bocca larga.
• Identificazione: come per la citopatologia, anche in questo caso è essenziale allegare al campione una apposita scheda d'accompagnamento.

Vi invitiamo a prendere visione preventivamente del documento "LINEE GUIDA ISTOLOGIA SAN MARCO"
Modulo istologico BIESSEA
Modulo richiesta istologico SAN MARCO
Modulo richiesta istologico cutaneo SAN MARCO
Linee guida istologia SAN MARCO

PREPARAZIONE DEI CAMPIONI

MATERIALE SCIENTIFICO

10 consigli per il coagulativo

E' fuori di dubbio che la coagulazione sia un complesso di eventi normalmente regolato in condizioni fisiologiche da numerosi fattori (integrita' vascolare , numero di piastrine , funzionalita' delle stesse, cascata coagulativa), e quindi per sua stessa natura sottoposto a numerose influenze ed interferenze, ed e' uno di quei test ematici di complessa valutazione / interpretazione. Senza entrare nello specifico, si ricordano alcune azioni fondamentali per ottenere un campione ideale ed evitare cosi' errori preanalitici.
1. per ottenere un buon campione e' necessario mettersi nelle migliori condizioni di prelievo. Luce adeguata, controllo del soggetto attraverso l'ausilio di una seconda persona, preparazione della provetta idonea , con relativa identificazione, prima di eseguire il prelievo ( ricordarsi che e' necessario utilizzare provette con anticoagulante citrato di sodio il rapporto da conseguire e' 1 parte di anticoagulante 9 di sangue. (es 0.25 ml di citrato di sodio prevedono di immettere 2.25 ml di sangue intero nella provetta.). Uno degli obiettivi principali dell' operatore che andrà ad effettuare il prelievo è ridurre l'ansia del paziente, che è uno dei fattori generali di vasocostrizione. Un'atmosfera calma è il requisito più importante per realizzare un buon prelievo.
2. Utilizzare sempre vasi di grosso calibro. Meglio la giugulare della radiale o safena.
3. Evitare l'utilizzo di lacci emostatici, la stasi prolungata altera tutti i parametri ematochimici compresi quelli emostatici.
4. Se vi rendete conto durante il prelievo che il sangue viene campionato con difficolta', prelievi traumatici/lenti, non corretto posizionamento dell'ago nel vaso, utilizzate un nuovo vaso.
5. Una volta ottenuto il materiale ,immetterlo nella provetta seguendo le diluizioni di cui sopra, e miscelare per inversione in maniera delicata per 1 minuto.
6. Centrifugare il campione per 4-5 minuti a 1500-2000 giri (rpm).
7. Si otterra' il plasma che dovra' essere separato in una seconda provetta di plastica senza alcun anticoagulante.
8. Evitare prelievi emolitici/lipemici gia' parzialmente coagulati.
9. Conservare in frigorifero 2-4 °C.
10. Un alterato rapporto sangue/anticoagulante potra' interferire sui tempi di coagulazione.